酶聯免疫吸附試驗（enzymelinkedimmunosorbentassay，ELISA）指將可溶性的抗原或抗體結合到聚苯乙烯等固相載體上，利用抗原抗體結合專一性進行免疫反應的定性和定量檢測方法。它是應用最多的一種免疫酶技術。
ELISA 測定的陽性判斷值, 通常是將大量陰性和陽性人群的測定數據進行統計分析后確定的, 其確定依據為判斷結果的假陽性和假陰性率最低。在陽性判斷值周圍一定范圍內之外的測定結果可歸為可疑, 亦即ELISA 測定的“灰區"。“灰區"的大小可用統計學方法確定。測定結果處于“灰區"的樣本, 可通過確認試驗或追蹤檢測來確定到底是陽性還是陰性ELISA“灰區"是把定量分析的正常值范圍引入定性分析而建立的概念。灰區的設置有二種: (1)CO × (1±C) , C 為該試劑的批內C (一般在15%～ 20% 間) ; (2)CO ±2S, S 為做室內ROC 的S。
另外, 個人認為: ELISA“灰區"對于不同項目和應用的領域不同, 其設置不能一概而論。根據美國疾病控制中心 (CDC) 對美國Ortho 的抗HC 檢測的ELISA 試劑盒進行研究, 發現只有檢驗結果S/CO ≥318 時, 高度預示HC 抗體真陽性狀態; 若檢驗結果S/CO < 318, 存在較高的假陽性。在血站系統的獻血員抗HC 篩查用上述兩種灰區的設置方法沒有什么不可; 如果臨床實驗室抗HC 的灰區也按前者設置,勢必存在較多的假陽性。ELISA 質量保證是一個復雜的過程, 許多重要的環節都影響到檢測的質量。現分析如下。
1 、方法學的影響
ELISA 測定模式包括以下幾種: 雙抗體夾心法、間接法、雙抗原夾心法、IgM 抗體捕捉法、競爭抑制法, 其中競爭抑制法因受操作時差所引起的bu 公平競爭等因素的影響, 結果重復性較差, 質量較難控制。
2 、試劑因素
試劑的選擇 檢測的原理均基于抗原抗體反應。由于該反應過程受多種因素的影響, 如普遍存在基質效應、交叉反應等, 因而檢測結果難以溯源, 不同方法、不同試劑之間甚至同一試劑不同批號間結果均缺乏可比性。試劑質量在很大程度上決定了檢測的水平, 因此在引入新項目之前必須對試劑進行嚴格的評估。試劑的評估有以下幾個步驟:
(1)確定開展該項目的必要性;
(2)了解該項目現有的檢測方法和原理;
(3)在了解試劑的組成基礎上選擇多家試劑盒進行比較,判斷標準shou 選參考方法或參考物質, 其次為臨床的滿意度及權wei 機構的報告如各級室間質量評價、CDC 報告等;
(4) 定期對檢測結果進行追蹤反饋直至最終認可該試劑。
3、樣本因素
標本干擾因素包括內源性干擾因素和外源性干擾因素,前者包括類風濕因子、補體、異嗜性抗體、自身抗體、溶菌酶等, 后者包括標本溶血、標本被污染、標本貯存時間過長、標本凝固不全、冷凍標本的反復凍融等。其中外源性干擾因素是我們在檢測過程中可以避免也是必須避免的因素, 而避免內源性因素的干擾則主要通過選擇合適的試劑盒。在臨床中遇到少見的疑難病例時應當考慮到內源性干擾因素的存在。以下對外源性干擾因素進行簡要說明:
標本溶血 要注意避免出現嚴重溶血。血紅蛋白中含有血紅素基團, 其具有類過氧化物的活性, 因此, 在以辣根過氧化物酶(ho rseradish peroxidase,HRP) 為標記酶的ELISA 測定中, 如果血清標本中血紅蛋白濃度較高, 則其就很容易在溫育過程中吸附于固相, 從而與后面加入的底物反應顯色。
4、操作因素對ELISA 結果的影響
ELISA 測定一般遵循以下步驟: 固相包被→加樣品→溫育→洗滌→加酶結合物→溫育→洗滌→加底物→溫育→顯色→終止顯色→比色
目前各種形式的ELISA 自動分析儀已經進入市場, 如廣泛應用于血站系統的微板式全自動酶免分析儀, 其試劑為開放式的, 而對于其它類型的, 則試劑和儀器往往是配套的。但當前大部分醫學實驗室均采用手工操作加儀器測定的方式。ELISA 操作步驟復雜, 操作不當將引起較大的誤差。以下敘述各個步驟中的影響因素。加樣器是一種比較精密的工具, 其在長時間使用時會因機械磨損或者推動桿內附著血痂等原因造成加樣不準, 尤其是對于樣本量較大的臨床實驗室, 因此必須定期對加液器進行維護和校準。每次加不同的標本時均需更換吸嘴, 以免發生交叉污染。加樣時速度不可太快, 避免將標本加在孔壁上部, 并注意不要濺出或產生氣泡。加樣時還應當注意操作時差對結果的影響, 操作時差是指加入標本、試劑及混勻時間的差異。操作時差在每個實驗中都存在, 尤其是手工操作, 日常檢測標本多達幾百個,從加入第一個標本到最后一個標本, 需幾十分鐘, 加入試劑及混勻等均存在著前后時間差異, 使抗原抗體反應和酶促反應時間不一致, 操作時差對競爭法檢測的結果影響更大, 在加酶結合物和底物時可用定量多道。
