ELISA可用于測定抗原，也可用于測定抗體。這種測定方法中有3種必要的試劑：1.固相的抗原或抗體；2.酶標記的抗原或抗體；3.酶作用的底物。
根據試劑的來源和標本的性狀及檢測的具備條件，可設計出各種不同類型的檢測方法。
1.雙抗體夾心法測抗原
針對抗原分子上兩個不同抗原決定簇的單克隆抗體分別作為固相抗體和酶標抗體。適用于測定二價或二價以上的大分子抗原，不適用于測定半抗原及小分子單價抗原，因其不能形成兩位點夾心。
2.競爭法測抗原
首先將特異性抗體包被于固相載體表面，經洗滌后分成兩組：一組加酶標記抗原和被測抗原的混合液，另一組只加酶標記抗原，經孵育洗滌后加底物顯色，這兩組底物降解量之差，即為所要測定的未知抗原的量。此方法測定的抗原只要有一個結合部位即可，對小分子抗原如激素和藥物類的測定常用此法。優點是快，缺點是需要較多量的酶標記抗原。
3.免疫抑制法測抗原
被檢標本對底物顯色的抑制程度與標本中所含抗原的量成正比，二者之差即為預測抗原的量。
4.間接法測抗體
是檢測抗體最常用的方法，原理為利用酶標記的抗抗體以檢測已與固相結合的受檢抗體。
本法只要更換不同的固相抗原，可以用一種酶標抗體檢測各種與抗原相應的抗體。主要用于對病原體的檢測而進行傳染病的診斷。
正式試驗時，應分別以陽性對照與陰性對照控制試驗條件，待檢樣品應作一式二份，以保證實驗結果的準確性。有時本底較高，說明有非特異性反應，可采用羊血清、兔血 清或BSA等封閉。
在ELISA中，進行各項實驗條件的選擇是很重要的，其中包括:
1、 固相載體的選擇：
許多物質可作為固相載體，如聚氯yi 烯、聚苯yi 烯、聚丙酰胺和纖維素等。其形式可以是凹孔平板、試管、珠粒等。目前常用的是40孔聚苯yi 烯凹孔板。不管何種載體，在使用前均可進行篩選：用等量抗原包被，在同一實驗條件下進行反應，觀察其顯色反應是否均一性，據此判明其吸附性能是否良好。
2、包被抗體(或抗原)的選擇：
將抗體(或抗原)吸附在固相載體表面時，要求純度要好,吸附時一般要求PH在9.0～9.6之間。吸附溫度，時間及其蛋白量也有一定影響,一般多采用4℃18～24小時。蛋白質包被的最適濃度需進行滴定：即用不同的蛋白質濃度(0.1、1.0和10μg／ml等)進行包被后，在其它試驗條件相同時，觀察陽性標本的OD值。選擇OD值最大而蛋白量最少的濃度。對于多數蛋白質來說通常為1～10μg／ml。
3、 酶標記抗體工作濃度的選擇：
首先用直接ELISA法進行初步效價的滴定(見酶標記抗體部份)。然后再固定其它條件或采取“方陣法”(包被物、待檢樣品的參考品及酶標記抗體分別為不同的稀釋度)在正式實驗系統里準確地滴定其工作濃度。
4、 酶的底物及供氫體的選擇：
對供氫體的選擇要求是價廉、安全、有明顯地顯色反應，而本身無色。有些供氫體(如OPD等)有潛在的致癌作用，應注意防護。有條件者應使用不致癌、靈敏度高的供氫體，如TMB和ABTS是目前較為滿意的供氫體。底物作用一段時間后，應加入強酸或強堿以終止反應。通常底物作用時間，以10-30分鐘為宜。底物使用液必須新鮮配制，尤其是H2O2在臨用前加入。
